Diagnostic de l’intertilité masculine

Diagnostic de l’intertilité masculine

Spermogramme

Lorsqu’il s’agit de fertilité masculine, l’une des étapes les plus importantes est l’analyse de la qualité spermatique par un spermogramme, examen essentiel permettant d’évaluer plusieurs paramètres des spermatozoïdes.

Le spermogramme mesure différents paramètres qui doivent respecter les valeurs minimales établies par l’Organisation Mondiale de la Santé (OMS). Si les résultats sont inférieurs à ces seuils, les chances de concevoir diminuent, car les spermatozoïdes doivent présenter une qualité suffisante pour atteindre l’ovocyte, le féconder, permettre un développement embryonnaire correct et obtenir une grossesse viable jusqu’au terme.

Un spermogramme fournit des informations essentielles sur la concentration, la mobilité et la morphologie des spermatozoïdes.

Spermogramme de base

  • Volume : pour être considéré comme normal, un échantillon doit contenir au moins 1,5 mL d’éjaculat.

  • Concentration : nombre de spermatozoïdes par millilitre de sperme, exprimé en millions/mL. Une concentration inférieure à 15 millions/mL peut compliquer la fécondation.

  • Nombre total de spermatozoïdes : similaire au paramètre précédent, mais tenant compte du volume total de l’échantillon. Un total inférieur à 39 millions peut réduire la probabilité de grossesse.

  • Mobilité : pour être normal, un échantillon doit présenter au moins 42 % de mobilité totale et/ou 30 % de mobilité progressive. La mobilité progressive correspond aux spermatozoïdes qui avancent réellement ; la mobilité non progressive désigne ceux qui bougent sans progresser (vibrations, mouvements circulaires…).

  • Morphologie : la spermatogenèse privilégie la quantité à la qualité, ce qui fait que de nombreux spermatozoïdes présentent des anomalies morphologiques. Un échantillon est considéré normal lorsqu’au moins 4 % des spermatozoïdes montrent des formes typiques (tête ovale, col robuste, flagelle mobile).

  • Vitalité spermatique : analyse le pourcentage de spermatozoïdes vivants. Elle est réalisée lorsque plus de 60 % des spermatozoïdes sont immobiles. Des techniques comme la coloration éosine-nigrosine ou le test hypoosmotique sont utilisées. Une vitalité inférieure à 58 % peut indiquer des troubles tels que la nécrozoospermie.

Spermogramme avancé

La fragmentation de l’ADN

Grâce aux progrès en embryologie et en andrologie, des analyses plus approfondies se concentrent sur l’intégrité et la fragmentation de l’ADN spermatique.

La fragmentation de l’ADN correspond au pourcentage de ruptures au sein du matériel génétique du spermatozoïde. Ainsi, même si un spermogramme montre des paramètres normaux, l’ADN peut être altéré, ce qui impacte fortement le développement embryonnaire et la viabilité de la grossesse.

L’ADN étant formé de deux brins, les ruptures peuvent être :

  • Fragmentation simple : rupture d’un seul des deux brins.

  • Fragmentation double : rupture affectant les deux brins de la molécule.

Ces altérations, simples ou doubles, ont un impact significatif, tant sur la fertilité naturelle, que sur les résultats des traitements de procréation médicalement assistée.

Une fragmentation élevée peut :

  • Réduire les taux de fécondation.
  • Diminuer la qualité embryonnaire.
  • Réduire la probabilité d’implantation.
  • Augmenter le risque de fausses couches.

La fragmentation de l’ADN spermatique est particulièrement pertinente dans les cas d’infertilité inexpliquée, d’échecs répétés d’implantation, d’embryons de mauvaise qualité, d’avortements à répétition, chez les hommes d’âge avancé ou en présence de varicocèle.

Le diagnostic est réalisé au moyen de techniques spécialisées telles que :

  • Le test de dispersion de la chromatine (SCD).
  • Le test TUNEL.

Les causes sont multiples : stress oxydatif, exposition aux toxines, tabac, âge avancé, altérations durant la production des spermatozoïdes…

Un mode de vie sain et la prise d’antioxydants peuvent réduire la fragmentation.

En procréation assistée, des techniques de sélection permettent d’isoler des spermatozoïdes présentant un faible taux de fragmentation. Dans les cas sévères, la sélection d’un spermatozoïde par biopsie testiculaire peut améliorer les taux de réussite.

Le FISH sur les spermatozoïdes

Le FISH, ou Hybridation In Situ en Fluorescence, permet de détecter si les spermatozoïdes présentent un nombre anormal de chromosomes (aneuploïdies), comme des chromosomes manquants ou supplémentaires, ou s’ils présentent deux copies de chaque chromosome (diploïdie). Il est vrai que certaines anomalies se produisent naturellement et sont considérées comme normales dans certaines limites ; cependant, un pourcentage élevé de spermatozoïdes présentant des altérations chromosomiques peut donner lieu à des embryons anormaux, réduire le taux d’implantation, augmenter le taux de fausses couches spontanées ou, dans de rares cas, entraîner la naissance d’un bébé avec une pathologie.

Les cellules de notre organisme possèdent l’information génétique organisée en 46 chromosomes (23 paires). Cependant, les ovocytes et les spermatozoïdes ne contiennent que 23 chromosomes chacun afin que, après la fusion des gamètes, la charge génétique de 23 paires qui formera l’embryon soit obtenue. Pour cette raison, si l’ovocyte ou le spermatozoïde possède un nombre incorrect de chromosomes, qu’il s’agisse d’un excès ou d’un déficit, l’embryon résultant aura une charge génétique anormale.

Cette technique n’est pas réalisée de manière routinière, car elle est indiquée dans les cas présentant des altérations du caryotype, chez les patients ayant reçu des traitements de chimiothérapie ou de radiothérapie, ainsi que chez les couples ayant connu des fausses couches récurrentes sans cause connue ou des échecs répétés d’implantation après des procédures de reproduction assistée. Elle est également recommandée en cas d’âge avancé, car ces altérations sont plus fréquentes avec l’âge, notamment après 45 ans, après des traitements de chimiothérapie ou de radiothérapie, ou lorsque le couple a eu un enfant présentant une altération chromosomique.

Ces altérations prennent naissance durant la spermatogenèse dans le testicule, le processus de formation des spermatozoïdes, lorsqu’il existe des cellules souches présentant des anomalies qui conduisent à la formation de spermatozoïdes avec un nombre incorrect de chromosomes.

La technique FISH sur spermatozoïdes est une technique cytogénétique qui utilise des sondes fluorescentes spécifiques pour analyser certains chromosomes. Dans un échantillon de sperme, les spermatozoïdes, après un traitement préalable, sont exposés à ces sondes et sont marqués par fluorescence puis, grâce à un microscope à fluorescence, les chromosomes d’intérêt sont identifiés et analysés.

Le FISH sur spermatozoïdes analyse généralement jusqu’à 9 chromosomes, en sélectionnant ceux qui présentent le plus souvent des altérations : les chromosomes 13, 15, 16, 17, 18, 21 et 22, ainsi que les chromosomes sexuels (X et Y). Il n’est pas possible d’analyser tous les chromosomes en raison de la limitation du nombre de couleurs disponibles pour les sondes ; c’est pourquoi les 9 chromosomes les plus fréquemment altérés sont analysés. Pour une analyse correcte, il est nécessaire de compter 500 spermatozoïdes, bien que les techniques automatisées permettent d’en analyser jusqu’à 10 000.

L’interprétation des résultats d’un FISH est complexe, car les plages de normalité varient en fonction du chromosome étudié.

En général, un résultat est considéré comme anormal si plus de 3,1 % des spermatozoïdes analysés présentent des chromosomes supplémentaires ou manquants, ce qui pourrait être une cause d’infertilité. Ce phénomène est appelé effet interchromosomique, selon lequel, si certains chromosomes présentent des anomalies, il est probable que d’autres chromosomes non étudiés ou présentant des altérations non détectées en aient également.

En cas de FISH altéré, le traitement le plus recommandé est la réalisation d’un Diagnostic Génétique Préimplantatoire (DGP), que ce soit dans le cadre d’une fécondation in vitro ou d’un don d’ovocytes, afin de sélectionner les embryons ayant une charge génétique correcte avant leur transfert dans l’utérus.

Biopsie testiculaire

La biopsie testiculaire est une procédure simple qui consiste à extraire un petit fragment de tissu testiculaire pour une analyse au microscope, dans le but d’évaluer si, après un diagnostic d’azoospermie, des spermatozoïdes sont présents dans le testicule — ce qui pourrait indiquer une obstruction des voies séminales empêchant leur sortie — ou si, au contraire, en l’absence de spermatozoïdes, il existe un problème dans leur formation.

Cette technique peut être réalisée de deux manières :

  • Biopsie Testiculaire Ouverte (TESE) : cette technique consiste à effectuer une petite incision dans la peau du scrotum et dans le testicule pour extraire un fragment de tissu testiculaire. La procédure dure généralement entre 15 et 20 minutes et se clôture avec des points de suture résorbables. Le tissu est ensuite analysé au laboratoire pour rechercher des spermatozoïdes et diagnostiquer d’éventuelles causes d’infertilité.

  • Biopsie Testiculaire Percutanée (TESA) : cette technique, moins invasive, consiste à insérer une fine aiguille dans le testicule afin d’aspirer du tissu. Bien qu’elle donne habituellement de bons résultats, elle peut être moins efficace pour récupérer des spermatozoïdes, notamment dans les cas d’azoospermie obstructive.

Ce procédé a deux objectifs principaux :

  • Diagnostic : identifier les causes de l’infertilité masculine, en particulier dans les cas d’azoospermie où aucun spermatozoïde n’est retrouvé dans le sperme.

  • Thérapeutique : Récupérer des spermatozoïdes directement dans le testicule afin de les utiliser dans des traitements de fécondation in vitro (FIV).

En général, la biopsie testiculaire est une procédure sûre, avec des risques minimes. Les complications les plus fréquentes peuvent inclure de légères infections ou des gênes temporaires dans la zone traitée.

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